Методики взятия крови

Взятие крови из "SAPHENOUS" (подкожная вена ноги) вены, как альтернатива орбитальному методу ( из глазной орбиты мыши)

Авторы материала :

Forsoksdyrveterinærtjeneste Laboratory Animal Veterinary Services Vivarium

ВИВАРИЙ ИНСТИТУТА В БЕРГАНЕ , Норвегия

Universitetet i Bergen , 5021-Bergen , NORGE

Перед представлением метода ВЗЯТИЯ КРОВИ ИЗ " SAPHENOUS "(подкожная вена ноги) ВЕНЫ, КАК АЛЬТЕРНАТИВУ ОРБИТАЛЬНОМУ МЕТОДУ( из глазной орбиты мыши) предлагаем Вам ознакомится с изображением ОРБИТАЛЬНОГО МЕТОДА( из глазной орбиты мыши)

Орбитальный метод - из глазной орбиты мыши

Обращаем внимание : retro - orbital collection – проводится только при применении анестезии

Авторство изображения Орбитального метода представлено на WEB картинке.

Перечень оборудования для взятия крови: Microvette (Микроветте) производства Sarstedt AG&Co, Германия с ускорителем свертывания для получения сыворотки и с Li – гепарином для получения плазмы ( на фото приведена цветовая кодировка по стандарту США ). Объем Microvette не более 300 мкл.

Внимание: пробирка 50 мл, используемая для обездвиживания имеет отверстия, которые высверливаются для обеспечения поступления воздуха в контейнер, в который поместят грызуна.

ВЗЯТИЕ КРОВИ ИЗ " SAPHENOUS "(подкожная вена ноги) ВЕНЫ

1. Животное помещается в контейнер (пробирку) без анестезии и обездвиживания

2. Задняя лапка оттягивается и фиксируется на изгибе складки кожи между нижней частью конечности и бедра.

3.Сейчас лапка зафиксирована и готова к бритью.

4.Шерсть сбривается с использованием скальпеля.

5.Вена saphenous видна на поверхности бедра и показана на фото синими стрелками. Обратите внимание, что лапка фиксируется за кожу между крайней частью бедра и нижней частью лапки.

6. Для пунктуации вены используется игла 23 G x 3/4 " (0,6 мм –цветовая кодировка – синяя). В нашем случае, нет необходимости вскрывать вену ланцетом.

7. Появившуюся каплю забирают в капилляр микроветте, приблизительно 100 мкл в зависимости от размера мыши

8. Стекающая кровь забирается капилляром микроветте. Скорость стекания крови возможно оптимизировать с помощью обработки поверхности кожи силиконовой смазкой.. Этот способ используется в случае проведения в течение дня нескольких заборов крови, для предотвращения образования корочки на одном месте.

9. Микроветте отводится в стороны, далее лапка фиксируется в положении, замедляющем ток крови в точке пунктуации.

10. Микроветте закрывается штатным колпачком. Помните, что мышь ещё находится в контейнере.

11. Открытая часть микроветте закрывается штатной крышкой.

12. Взятая проба крови помещается в контейнер, входящий в комплект микроветте. Размеры микроветте в сборе соответствуют общепринятым стандартам для микропробирок объёмом 1,5 – 2,0 мл и пригодны для центрифугирования.

13. Микроветте с пробой крови готов для последующих действий

14. Ватный или марлевый тампон прикладывается к точке пункции и кровотечение останавливается. Вскоре формируется корочка . Она удаляется для проведения повторного забора крови с этого места. Это место может быть использовано несколько раз в течение дневной процедуры.

15. Компресс удерживается до полной остановки крови , затем мышь возвращается в клетку .

16. Также кровь можно забирать из другой лапки. С противоположной стороны ( в данном случае правой) используется складка кожи между брюшком и черепом, бедро используется для фиксации лапки

17. Задняя часть зафиксирована как и в первом случае и боковая поверхность лапки готова к бритью.

18. Лапка находится в правильном положении и готова к дальнейшим действиям.

Эта методика была представлена :the Laboratory Animal Centre of the Norwegian Institute of Public Health by Annelise Hem and Per Solberg. Методика далее развита :the Norwegian Resource Group for Laboratory Animal Science, включая Adrian Smith, Laboratory Animal Unit , Norwegian School of Veterinary Science and Richard T. Fosse, University of Bergen . Методика опубликована в Laboratory Animals :Hem A, Smith AJ & Solberg P (1998): Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guineapig, ferret and mink. Laboratory Animals 32: 364-368 Фотографирование этого метода проведено в Bergen and shows modifications developed at the Vivarium of the University of Bergen . Web картинки подготовлены при помощи : the Department Of Comparative Medicine, Medical University of South Carolina. При использовании этого материала необходимо ссылаться на авторов этого метода.